Главная страница

Школа: стендовые доклады участников

Дата публикации: 08.01.2010
Метки: Школа; паразитарные системы; море; биоэкология; морские организмы

Работа Школы 4 ноября завершилась изучением стендовых докладов участников. В стендовой экспозиции были представлены следующие сообщения:


«Роль паразитологических исследований морских промысловых рыб в рыбной отрасли России» (кандидат биологических наук, зав. сектором болезней рыб и других гидробионтов отдела воспроизводства и марикультуры ВНИРО (г. Москва) Татьяна Владимировна Безгачина);


«Особенности фауны скребней (Acanthocephala) трески (Gadus morhua callaris L.) и камбалы (Platichthys flesus L.) в юго-восточной части Балтийского моря» (инженер АтлантНИРО (г. Калининград) Александр Алексеевич Елисеев);


«Влияние кортизона на зараженность карпа (Cyprinus carpio L.) дактилогирусами» (научный сотрудник ИБВВ РАН (г. Борок) Даниил Вениаминович Микряков);


«Результаты паразитологических и бактериологических исследований африканского сома Clarias gariepinis» (доктор биологических наук, ученый секретарь межведомственной ихтиологической комиссии (г. Москва) Авиэтта Михайловна Наумова);


«Кокцидии рода Aggregata Frenzel, 1885 – паразиты головоногих моллюсков: обзор» (зав. лабораторией промысловых беспозвоночных АтлантНИРО (г. Калининград) Чингиз Мухамедович Нигматуллин);


«Жизненный цикл и экологическая ниша паразитических животных: теоретический аспект» (зав. лабораторией промысловых беспозвоночных АтлантНИРО (г. Калининград) Чингиз Мухамедович Нигматуллин);


«Терминологические проблемы, связанные с обозначением хозяев личиночных форм гельминтов» (зав. лабораторией промысловых беспозвоночных АтлантНИРО (г. Калининград) Чингиз Мухамедович Нигматуллин);


«Морфология сорбционных поверхностей личинок трематод рода Himasthlina (Trematoda: Echinostomatidae) из беломорских литоральных биоценозов» (младший научный сотрудник кафедры зоологии беспозвоночных Казанского государственного университета Наталья Валерьевна Ряховская);


«Паразитофауна черноморско-каспийской тюльки Clupeonella cultriventris Nordmann на северной границе ареала» (кандидат биологических наук, старший научный сотрудник ИБВВ РАН (г. Борок) Андрей Владимирович Тютин);


«Зависимость некоторых гематологических показателей от зараженности жабр леща (Abramis brama L.) Куршского залива (Балтийское море)» (инженер АтлантНИРО (г. Калининград) Наталья Николаевна Чукалова);


«О зараженности Tracheliastes maculates Kollar, 1836 (Copepoda: Lernaeopodidae) леща в Куршском заливе (юго-восточная часть Балтийского моря)» (кандидат биологических наук, старший научный сотрудник АтлантНИРО (г. Калининград) Ольга Александровна Шухгалтер, студентка Калининградского государственного университета Ирина Александровна Гулько).


5 ноября участники и гости Школы посвятили обмену опытом практической работы в лабораториях и изучению книжных и музейных фондов. В.В. Куклиным для гостей из Мурманского областного центра детского туризма была проведена экскурсия-лекция, посвященная истории и основным направлениям научной работы ММБИ с показом основной экспозиции биологического музея. Основная часть иногородних участников школы посетила лабораторию паразитологии и физиологии рыб ПИНРО и паразитологическую лабораторию Мурманской областной службы санитарно-медицинского контроля.


В лаборатории ММБИ для студентов и молодых ученых был проведен паразитологический практикум, посвященный обработке гельминтологического материала от морских птиц. После теоретического инструктажа и предварительного показа молодые ученые самостоятельно проводили вскрытия,  приобретая необходимые практические навыки по применению основных методик камеральной обработки материала.


У птиц снималась шкурка и проводился наружный осмотр тела. При вскрытии отпрепаровывались все внутренние органы; каждый орган помещался в отдельную чашку Петри с морской водой. После этого  от пищеварительного тракта отделялись пищевод и желудок и производилось измерение общей длины кишечника. От кишечника последовательно, по направлению от двенадцатиперсной кишки к клоаке, отрезались фрагменты длиной по 10 см (у мелких птиц – по 5 см), каждый из которых вскрывался отдельно. Кишечный химус соскабливался предметным стеклом со стенки кишки и помещался в стаканы с подогретой до 400 С смесью морской и пресной воды в пропорции 1:1. Проводилось взмучивание, а через некоторое время отстоявшаяся над осадком вода сливалась в чашку  Петри.  Под бинокуляром выполнялся ее контроль на наличие паразитов. После ряда "взмучиваний-сливов" осадок помещался в чашку Петри с водой и просматривался для обнаружения паразитов под стереомикроскопом МБС-10. Ряд органов (в частности, почки и мочеточники) исследовались компрессорным способом (Быховская-Павловская, 1985). Отдельно просматривалось и фиксировалось содержимое желудка и пищевода, исследовались на присутствие паразитов сердце, печень, желчный пузырь и легкие.


Извлеченные из кишечника и из других органов гельминты фиксировались по общепринятой методике (трематоды, цестоды и скребни - в 70 %-м растворе этилового спирта, а нематоды – в подогретом 4 %-м растворе формалина на морской воде). Позднее из фиксированных трематод, цестод и скребней изготовлялись тотальные препараты, окрашенные квасцовым кармином; по этим препаратам проводилась видовая идентификация паразитов. При определении нематод их предварительно просветляли 40 % раствором молочной кислоты.


При изготовлении препаратов из зафиксированных цестод и трематод основные сложности были связаны, как правило, с недостаточной дифференциацией окраски элементов половой системы, а также со сгибанием и перекручиванием червей при обезвоживании и просветлении. Указанные обстоятельства приводили к деформации и сморщиванию гельминтов, невозможности идентификации многих диагностических признаков и, как следствие, серьезным проблемам при видовом определении. В ходе камеральной обработки материала использовалась модифицированная методика изготовления тотальных микроскопических препаратов паразитических плоских червей (Куклин, 2004), позволившая устранить большинство из перечисленных недостатков. Предлагаемая методика при соблюдении последовательности, временных интервалов каждого этапа и постоянном контроле процесса под бинокуляром позволяла получить препараты хорошего качества, с четкими и контрастными картинами анатомического строения изучаемых объектов.

Читать запись полностью »



Страницы: 1 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45